Extensão Cooperativa: Maine Mirtilos Selvagens

> Média de Concentrações

Vitaminas

A vitamina concentrações de mirtilos selvagens têm sido documentados por Bushway et al. (1983) e Yang e Atallah (1985). Bushway et al. documentado concentrações de vitaminas A e C, Niacina, Riboflavina e Tiamina em frutas frescas com concentrações de 0.46, 68, 13, de 0,54, e 23.0, µg/g, respectivamente. Yang e Atallah quantificaram as vitaminas A, C e niacina em bagos congelados com concentrações de 0,36, 7,1 e 14,2 µg/g, respectivamente. O grande desvio na vitamina C no estudo Yang e Atallah foi atribuído ao congelamento e armazenamento dos bagos, bem como à variação genética dos clones. Globalmente, os bagos congelados demonstraram ter mais vitamina A e menos vitamina C quando comparados com os mirtilos selvagens frescos. Enquanto os mirtilos selvagens frescos também apresentaram diminuições na vitamina C com armazenagem superior a 8 dias (a 20 °C e 30 ° C) (Kalt et al. 1999).

antioxidantes

uma taça½, ou 150 mirtilos silvestres maduros, pode fornecer 200-400 mg de polifenóis (Gibson et al. 2013). Descobriu-se que a mirtilo Lowbush tem maior teor de antocianina do que a mirtilo highbush, framboesa e morango, mas também a mais baixa vitamina C quando comparado com aquelas 3 bagas (Kalt et al. 1999). Os polifenóis, que se encontram no interior da planta e têm propriedades antioxidantes, mostraram mudar de concentração com a maturação (maturidade) dos frutos. Gibson et al. (2013) encontrou bagas maduras com uma capacidade total de antioxidantes de 125 (mg TE/g DW) utilizando antioxidantes redutores férricos em pó (FRAP), em que TE são equivalentes Trolox e DW é peso seco. Neste caso, os bagos verdes tinham uma maior capacidade total de antioxidantes (com antioxidantes que não a antocianina) dos polifenóis quando comparados com os bagos vermelhos, azuis e “demasiado maduros”, o que sugere o potencial de utilização de bagos verdes com valor acrescentado. A concentração de antocianina aumentou com a maturação das bagas (Gibson et al. 2013).

os correspondentes benefícios para a saúde

a presença de antioxidantes na dieta evita o estresse oxidativo causado pela formação de “radicais livres”, associados ao cancro, doenças cardíacas, diabetes, envelhecimento e muito mais. Para obter mais informações sobre os benefícios de saúde de mirtilo selvagem antioxidantes, por favor visite: http://www.wildblueberries.com/health-research/antioxidants/

Minerais

Como eficaz colonizadores do perturbadas, mirtilos selvagens são tolerantes a ambientes extremos, com solos ácidos (pH baixo) e a presença de minerais (Sheppard, 1991; Smagula & Litten, 2003). O pH óptimo do solo para o mirtilo selvagem é de 4,5, no entanto, os campos podem variar de 3,9 a 5,3 (Smagula & Litten, 2003). O enxofre é aplicado como uma ferramenta de manejo de ervas daninhas, onde o pH é reduzido a um ponto onde a amora selvagem pode viver, mas as espécies de ervas daninhas lutam. Solos com pH inferior (ácido) em campos de mirtilos selvagens têm sido associados a maiores concentrações minerais no solo, afectando subsequentemente a composição química da folhagem (Hall et al. 1964).

Quadro 1. Concentrações médias de minerais de mirtilo selvagem encontradas na folha, caule e bagas pelo Sheppard (1991) e de minerais de bagas identificadas por Bushway et al. (1983) e Yang e Atallah (1985). Uma coluna adicional inclui os valores alimentares diários (DV) estabelecidos pela FDA para adultos (os limites das crianças são mais baixos) a partir da Base de dados do rótulo do suplemento alimentar (DSLD, não publicado, 2019 https://www.dsld.nlm.nih.gov/dsld/dailyvalue.jsp). Cem bagas são aproximadamente 1/3 de copo.

Fontes	Sheppard 1991					Bushway et al. 1983	Yang & Atallah 1985	DSLD/ FDA
	Folha	Haste	Seca Berry	Fresco Berry	Por 100 Bagas	Fresco Berry	Congelados Berry	Valores Diários
Minerais	secas (µg/g)	secas (µg/g)	secas (µg/g)	molhado (µg/g)	µg/100 bagas	molhado (µg/g)	molhado (µg/g)	µg/dia
Alumínio	170	56	20	3.7	81	3	–	3,500-10,000*
Boro	48.7	–	–	–	–	1	–	NA**
Cálcio	6300	2900	1310	230	5300	212	33	1300000
Cobre	6.3	5.8	7.8	1.5	312	0.4	–	900
Ferro	104	107	4.8	0.91	20	3.1	5	18000
Chumbo	1.5	–	–	–	–	–	0.3	12.5
Magnésio	2200	670	540	99	2200	81.5	40	420,000
Este	1500	1170	181	31	740	25.6	25	2,300
Nickle	4	–	–	–	–	–	–	–
Fósforo	900	1170	1030	190	4200	123	113	1250000
Potássio	3800	2700	4200	780	17000	684	753	4700000
Silício	251	–	–	–	–	–	–	NA
Enxofre	1500	610	630	110	2500	–	–	NA
Titânio	5.3	–	–	–	–	–	–	NA
Zinco	15.6	38	7.1	1.33	29	1	–	11,000

*os valores Diários de Alumínio nos alimentos não são especificados pela FDA, esta gama vem de Yokel de 2008.
* * na indica não disponível, pois estes limites minerais não foram estabelecidos ou foram considerados seguros (no caso do enxofre).Concentrações de preocupação

com base nos valores diários da FDA listados acima (Quadro 1), As bagas teriam de ser concentradas entre 3 e 900 vezes para atingir limites de consumo diário. As concentrações minerais próximas aos valores diários incluem cobre e manganês. Estas estimativas baseiam-se na concentração mineral em 100 bagas, ou 1/3 cup (fornecido pelo Sheppard 1991); o número de bagas num concentrado ou a quantidade diária de consumo devem também ser considerados na transformação.

efeitos do processamento

vitaminas

tem sido documentado que o aquecimento de frutas e produtos hortícolas diminui a actividade vitamínica nos alimentos através da oxidação de vitaminas (Yang e Atallah 1985; Lopez et al. 2010). Descobriu-se que a vitamina C se degradava em mirtilo com temperaturas superiores a 80°C (Lopez et al. 2010). Yang e Atallah (1985) analisaram como essas concentrações mudam com vários métodos de secagem (congelamento seco, ar forçado, forno de vácuo e micro-convecção). Dos quatro métodos de secagem testados, as vitaminas A E C diminuíram significativamente em relação ao controlo (congelado), com todos os métodos de transformação, excepto a secagem por congelação. Esta diminuição do teor vitamínico com métodos de secagem específicos foi atribuída ao uso do calor. A niacina também diminuiu significativamente em todos os métodos de secagem, exceto a micro-convecção em comparação com o controle (congelado). No entanto, a congelação rápida Individual tem sido associada à retenção de vitamina C, fenóis e capacidade de antocianina (revisão: Kalt et al. 2019).

minerais

curiosamente, as concentrações minerais não foram afectadas por tratamentos de secagem, com excepção do magnésio, que diminuiu significativamente com a secagem a frio e o sódio, que aumentaram com a micro-convecção (Yang e Atallah 1985). Embora as concentrações minerais de mirtilo selvagem não tenham sido alteradas com vários métodos de secagem, é importante ter em mente o aumento relativo da porção quando se altera o estado físico das bagas.

antioxidantes

ao processar mirtilo selvagem há uma grande possibilidade de perda de antocianinas dependendo do método de armazenamento ou processamento (Routray & Orsat 2012, Donahue, 2000). Todos os fatores listados abaixo (compilado a partir do Rotray & Orsat, 2012; Kalt et al. 2019; Yang e Atallah 1985) levam a uma perda de antocianina. Em alguns casos, observou-se um aumento das antocianinas (fermentação; Rotray & Orsat, 2012).

Fatores que levam a maior perda de antocianina:

Escapamento: Resultado da soft/perfurado frutos ou bagas idade
Calor: Superior a 158°F (70°C)
desidratação Osmótica
Suco, geléia ou extratos armazenados em temperatura ambiente

Métodos encontrado para reduzir antocianina perdas durante o armazenamento e aumentar a vida de prateleira:

Refrigeração*
Fermentação**
Congelamento Rápido
Freeze-secagem a Baixa temperatura (se cozinhar é necessário), 104-140°F (40-60°C)
Embalagem em Atmosfera Modificada (MAP)
Pasteurização técnicas
Radiante zona de secagem
branqueamento a Vapor
O uso de vários métodos de secagem em combinação

*Resfriamento foi encontrado para aumentar fenólicos síntese que aumenta o conteúdo de antocianina.

**verificou-se que a fermentação aumenta a capacidade antioxidante (Martin e Martar, 2005).

Bushway, R. J., D. F. M. Gann, W. P. Cook, A. A. Bushway. 1983. Teor Mineral e vitamínico dos mirtilos-de-bico-baixo (Vaccinium angustifolium Ait.). J. Food Sci. 48(6):1878–1878. doi: 10.1111 / J. 1365-2621. 1983.tb05109.x.

Donahue, D. W., Bushway, A. A., Smagula, J. M., Benoit, P. W., & Hazen, R. A. 2000. Avaliação dos tratamentos pré-colheita no Maine Wild Blueberry Fruit Shelf-Life and Processing Quality. Small Fruits Review. 1: 1, 23-34, DOI:10.1300/J301v01n01_04

DSLD. 2019. Referência do valor diário da Base de dados do rótulo do suplemento dietético (DSLD). Disponível em https://www.dsld.nlm.nih.gov/dsld/dailyvalue.jsp (verificado em 2 de dezembro de 2019).Gibson, L., Rupasinghe, H. P. V., Forney, C. F., & Eaton, L. 2013. Caracterização das alterações nos polifenóis, na capacidade antioxidante e nos parâmetros físico-químicos durante o amadurecimento dos frutos de mirtilo de lowbush. Antioxidantes, 2 (4), 216-229. https://doi.org/10.3390/antiox2040216

Hall, I. V., Aalders, L. E., Townsend, L. R., 1964. The effects of soil pH on the mineral composition and growth of the lowbush blueberry. Canadian Journal of Plant Science. 44:433-438.Kalt, W., C. F. Forney, A. Martin, and R. L. Prior. 1999. Capacidade antioxidante, vitamina C, fenóis e antocianinas após armazenamento fresco de pequenos frutos. Journal of Agricultural and Food Chemistry 47 (11): 4638-4644.Kalt, W., A. Cassidy, L. R. Howard, R. Krikorian, A. J. Stull, F. Tremblay, and R. Zamora-Ros. 2019. Pesquisas recentes sobre os benefícios para a saúde de mirtilos e suas antocianinas. Avanços na nutrição.

López, J., Uribe, E., Vega-Gálvez, A., Miranda, M., Vergara, J., Gonzalez, E., & Di Scala, K. (2010). Efeito da temperatura do ar na cinética de secagem, vitamina c, actividade antioxidante, teor fenólico total, browning não enzimático e firmeza da variedade de mirtilos óleil. Food and Bioprocess Technology, 3 (5):772-777. https://doi.org/10.1007/s11947-009-0306-8

Martin, L. J., and C. Matar. 2005. Aumento da capacidade antioxidante do mirtilo (Vaccinium angustifolium) durante a fermentação por uma nova bactéria da microflora frutícola. Journal of the Science of Food and Agriculture 85 (9): 1477-1484.

Routray, W., & Orsat, V. 2011. Mirtilos e suas antocianinas: fatores que afetam a biossíntese e propriedades. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 10 (6):303-320. Sheppard, S. C. 1991. A field and literature survey, with interpretation, of elemental concentrations in blueberry (Vaccinium angustifolium). Canadian Journal of Botany, 69(1):63-77. https://doi.org/10.1139/b91-010

Smagula, J. M., & Litten, W. 2003. O pH do solo de mirtilo pode ser muito baixo? Acta Horticulturae, 626: 309-314. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2003.626.43

USDA & NASS. 2019. USDA/NASS, Serviço Nacional de estatísticas agrícolas. QuickStats Ad-hoc Query Tool. Disponível em https://quickstats.nass.usda.gov/ (verificado em 10 de dezembro de 2019).

Yang, C. S. T., & W. A. Atallah. 1985. Efeito de quatro métodos de secagem na qualidade dos mirtilos de Lowbush com Humidade intermédia. J. Food Sci. 50(5):1233–1237. doi: 10.1111 / J. 1365-2621. 1985.tb10450.x.

Yarborough, D., Drummond, F., Annis, S., & D’Appollon, J. (2017). Análise do Maine wild blueberry systems. Acta Horticulturae, 1180: 151-159. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2017.1180.21