Dermatomykose

A. Dermatomykose (Trichophyton mentagrophytes)

Dermatomykose (Dermatophytose, Ringelflechte oder Favus) wird seit langem mit Wild- und Labornagern in Verbindung gebracht. Obwohl die Literatur, insbesondere ältere Berichte, ist voll von Synonymen, Es wird nun allgemein der Schluss gezogen, dass die Ätiologie der Mehrheit der natürlich vorkommenden Nagetier-Ringelflechte durch Trichophyton mentagrophytes verursacht wird. Diese Art ist jedoch eine der polymorphsten der Dermatophyten, und das Versäumnis, ihre Formenvielfalt zu erkennen, hat zu Verwirrung in der Taxonomie geführt. Zwei Hauptformen des Organismus werden erkannt: (1) eine zoophile Variante mit körniger kolonialer Oberfläche und roter Pigmentierung namens T. mentagrophytes var. T. mentagrophytes und (2) eine anthropophile Form mit weißer, flauschiger kolonialer Oberfläche und ohne Pigmentierung bezeichnet T. mentagrophytes var. interdigitalis (Ajello, 1974). Molekulare Ansätze wurden verwendet, um T zu klassifizieren. Mentagrophyten-Substrate auf Basis von DNA-Sequenzen (Makimura et al., 1998; Kim, 2001). Viele Berichte, insbesondere in der Maus, beziehen sich auf T. quinckeanum als separate und eigenständige Art, aber die meisten modernen Mykologen betrachten T. quinckeanum als Synonym für T. mentagrophytes var. mentagrophyten (Ajello et al., 1968). Beide Varianten können Labornager infizieren. Viel seltener wurden mehrere andere dermatophytische Arten sowohl bei Wild- als auch bei Labornagern angetroffen (Feuerman et al., 1975; Kunstyr, 1980; Papini et al., 1997; Connole et al., 2001).

Dermatomykose ist häufiger als eine Erkrankung von Labormäusen (Parish und Craddock, 1931; Booth, 1952; Brown und Parker, 1957; Menges et al., 1957; Dolan et al., 1958; Mackenzie, 1961; Cetin et al., 1965; Davies und Shewell, 1965; Reith, 1968) und Meerschweinchen (Menges und Georg, 1956; Kaffka und Reith, 1960; Mohapatra et al., 1964; Otcenasek et al., 1974; Owens und Wagner, 1975; Pombier und Kim, 1975; Kunstyr et al., 1980) als bei Ratten (Dolan et al., 1958; Dolan und Fendrick, 1959; Georg, 1960; Povar, 1965; Mizoguchi et al., 1986), wie das Volumen der Literatur zeigt. Periodische Vermessungsarbeiten zeigen, dass T. mentagrophytes bei Wildratten nicht ungewöhnlich ist (Smith et al., 1957; Georg, 1960; Thierman und Jeffries, 1980) und Mäuse (Brown und Suter, 1969; Chmel et al., 1975), obwohl, wie unten ausgeführt wird, der asymptomatische Trägerzustand häufiger sein kann als realisiert. Die Krankheit bei Ratten kann eine Tierseuchenform annehmen, wobei viele der Tiere Läsionen aufweisen, oder sie kann heimtückisch sein und durch läsionslose Träger gekennzeichnet sein. In beiden Präsentationsmodi besteht eine erhebliche Gefahr für menschliche Kontakte; tatsächlich ist eine Infektion des Menschen durch Personen, die mit den Tieren umgehen, häufig der erste Hinweis darauf, dass sich die Infektion in der Kolonie befindet. Die meisten menschlichen Infektionen treten an den exponierten, relativ haarlosen Körperteilen auf; vor allem die Hände und der Arm.

Wie oben erwähnt, nimmt die Infektion bei Ratten eine variable Form an und es wird angenommen, dass sie von einer Reihe von Faktoren beeinflusst wird, die sich direkt auf die Anfälligkeit oder Resistenz auswirken, z. B. Alter, genetische Konstitution, immunologische Kompetenz und Phase des Haarwachstumszyklus sowie andere weniger verstandene Faktoren. Cortison-Injektionen, um diese Hypothese experimentell zu testen, beeinflussten den Infektionsgrad im Vergleich zu unbehandelten Meerschweinchen nicht (Fisher und Sher, 1972). Die wenigen berichteten Tierseuchen mit läsionierten Ratten traten alle bei nicht genutzten Tieren vor dem Experiment auf (Dolan et al., 1958; Povar, 1965; Mizoguchi et al., 1986). Läsionen, wenn vorhanden, können in der Haut von jedem Bereich auftreten, sind aber am häufigsten am Hals, Rücken und Basis des Schwanzes. Läsionen sind nicht wie klassisch beschrieben, d.h. einheitlich scheibenförmig mit Alopezie und erhöhten Rändern, sondern können ein schuppiges oder erythematöses papulös-pustulöses Aussehen mit unregelmäßigem, fleckigem Haarausfall aufweisen. Läsionen am Schwanz (typischerweise in der Maus gesehen) wurden bei Ratten von Povar (1965) in dem von ihm beschriebenen Ausbruch nicht gesehen.

Die Diagnose der Dermatophytose wird durch Nachweis von Pilzelementen in Hautabschürfungen und Isolierung des Erregers durch Kultur festgestellt. Die Histopathologie der betroffenen Haut unterstützt die Zuordnung der Läsionsentwicklung zu isolierten Dermatophyten, wenn eine Invasion epidermaler Strukturen nachgewiesen werden kann. Histologische Schnitte, die mit Gridley-Pilzflecken gefärbt sind, zeigen Pilzelemente im oberflächlichen Epithel und das Eindringen von Haarfollikeln. Eine sekundäre Invasion von Pilzläsionen durch Bakterien mit eitriger Entzündung wird häufig beobachtet und ist die Ursache für kerionartige Läsionen sowohl bei Tieren als auch beim Menschen. Die Differentialdiagnose für Dermatophytose sollte auch andere Ursachen für ähnlich auftretende Hautläsionen berücksichtigen, einschließlich Staphylokokken-Colitis-Dermatitis, Kampfbisstrauma, Haarkauen oder -tauschhandel durch Käfiggenossen und ektoparasitäre Überempfindlichkeit (Kunstyr, 1980).

Hautabschürfungen sollten sorgfältig von der Läsionsperipherie entnommen, in 10% iges Kaliumhydroxid unter einem Vaseline-beringten Überzug montiert und sofort und nach 30 Minuten erneut unter dem Mikroskop untersucht werden. Wenn vorhanden, werden septierte Myzelien in Plattenepithelzellen beobachtet. Kleine Sporen (2 bis 3 µm) ectothrix Invasion der Haare, vor allem in der Nähe der Basis, sind in T. mentagrophytes Infektionen gesehen. Ebenso gesammelte Kratzer sollten auf die Oberfläche eines geeigneten Agarmediums inokuliert und mindestens 10 Tage bei Raumtemperatur aerob kultiviert werden, bevor sie als Negativ verworfen werden. Geeignete Medien umfassen DTM (Dermatophyten-Testmedium mit Farbindikatoren) (Carroll, 1974) oder Sabouraud-Medium mit Cycloheximid und Chloramphenicol zur Hemmung nicht-dermatophytischer Kontaminanten (Rosenthal und Furnari, 1957; Rebell und Taplin, 1970). Ein typisches mikroskopisches Merkmal von T. mentagrophytes (Makrokonidien, Spiralspulen) sollte nachgewiesen werden (Rebell und Taplin, 1970).

Mackenzies Haarbürstentechnik wird verwendet, um die Inzidenz von läsionslosen, asymptomatischen Trägerratten zu bewerten (Mackenzie, 1963; Rosenthal und Wapnick, 1963; Papaini et al., 1997). Diese Technik kann verwendet werden, um Probengruppen von Ratten zu screenen, um ihren Status als asymptomatische Träger von Dermatophyten festzustellen, obwohl in Ermangelung verdächtiger Läsionen geplante Gesundheitsüberwachungstests für Dermatophyten von FELASA nicht empfohlen werden (Nicklas et al., 2002). Es gibt einige Hinweise darauf, dass dieser Zustand bei der Ratte häufig auftreten kann (Dolan et al., 1958; Dolan und Fendrick, 1959; Gugnani et al., 1971; Balsari et al., 1981; Papini et al., 1997), wie sie häufiger bei Meerschweinchen, Mäusen und Katzen erkannt wird (Fuentes und Aboulafia, 1955; Fuentes et al., 1956; Menges et al., 1957; Dolan et al., 1958; Rosenthal und Wapnick, 1963; Gip und Martin, 1964; Feuerman et al., 1975). Bei dieser Technik wird das zu screenende Tier über eine geöffnete Petrischale aus geeignetem Agarmedium gehalten und das Haar mit einer sterilen chirurgischen Bürste gebürstet, so dass Haare, Flocken und abgeschuppte Zelltrümmer direkt auf die Mediumoberfläche fallen. Die Platte wird wie oben beschrieben inkubiert.

Die Ausrottung und Bekämpfung in Forschungskolonien beinhaltet in der Regel die Zerstörung der betroffenen Gruppen und die Sterilisation oder Desinfektion von Geräten und Umweltoberflächen. Ein modifizierter Rederivationsansatz zur Eradikation in einer Zuchtkolonie wurde von Mizoguchi et al. (1986). Dieses Programm beinhaltete die Entfernung aller Ratten aus der Kolonie, Desinfektion der Räumlichkeiten mit Formalin und Natriumpropionat, und anschließende Auffüllung der Kolonie mit Entwöhnungen von nicht gepolsterten Dämmen, die vor der Wiedereinführung in Natriumpropionat getaucht waren. Obwohl die klinische Wirksamkeit der Fütterung von Griseofulvin zur Behandlung von Dermatomykose bei anderen Laborspezies gemischte Ergebnisse gezeigt hat (Cetin et al., 1965; Pombier und Kim, 1975) wurde seine Wirksamkeit für diesen Zweck bei Ratten nicht untersucht. Es ist nicht bekannt, dass der Organismus die Plazenta durchquert, und er wurde nicht von Barriere-aufgezogenen Laborratten gewonnen.

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