A. Dermatomycose (Trichophyton mentagrophytes)
La dermatomycose (dermatophytose, teigne ou favus) a longtemps été associée aux rongeurs sauvages et de laboratoire. Bien que la littérature, en particulier les rapports plus anciens, regorge de synonymes, il est maintenant généralement conclu que l’étiologie de la majorité des vers de la teigne des rongeurs d’origine naturelle est causée par Trichophyton mentagrophytes. Cette espèce, cependant, est l’une des plus polymorphes des dermatophytes, et le fait de ne pas reconnaître sa gamme de formes a conduit à une confusion dans la taxonomie. Deux formes principales de l’organisme sont reconnues: (1) une variante zoophile à surface coloniale granulaire et pigmentation rouge nommée T. mentagrophytes var. T. mentagrophytes et (2) une forme anthropophile à surface coloniale blanche et duveteuse et sans pigmentation désignée T. mentagrophytes var. inter-digitalis (Ajello, 1974). Des approches moléculaires ont été utilisées pour classer T. sous-souches de mentagrophytes sur la base de séquences d’ADN (Makimura et al., 1998; Kim, 2001). De nombreux rapports, en particulier chez la souris, désignent T. quinckeanum comme une espèce distincte et distincte, mais la plupart des mycologues modernes considèrent T. quinckeanum comme synonyme de T. mentagrophytes var. mentagrophytes (Ajello et al., 1968). Les deux variantes peuvent infecter les rongeurs de laboratoire. Beaucoup moins fréquemment, plusieurs autres espèces dermatophytes ont été rencontrées chez des rongeurs sauvages et de laboratoire (Feuerman et al., 1975; Kunstyr, 1980; Papini et al., 1997; Connole et coll., 2001).
La dermatomycose est plus fréquente chez les souris de laboratoire (Parish et Craddock, 1931; Booth, 1952; Brown et Parker, 1957; Menges et al., 1957; Dolan et coll., 1958; Mackenzie, 1961; Cetin et coll., 1965; Davies et Shewell, 1965; Reith, 1968) et cobayes (Menges et Georg, 1956; Kaffka et Reith, 1960; Mohapatra et al., 1964; Otcenasek et coll., 1974; Owens et Wagner, 1975; Pombier et Kim, 1975; Kunstyr et al., 1980) que des rats (Dolan et al., 1958; Dolan et Fendrick, 1959; Georg, 1960; Povar, 1965; Mizoguchi et al., 1986), comme l’indique le volume de la littérature. Des études périodiques indiquent que T. mentagrophytes n’est pas rare chez les rats sauvages (Smith et al., 1957; Georg, 1960; Thierman et Jeffries, 1980) et des souris (Brown et Suter, 1969; Chmel et al., 1975), bien que, comme on le soulignera plus loin, l’état de porteur asymptomatique puisse être plus fréquent que ce qui est réalisé. La maladie chez le rat peut prendre une forme épizootique, avec de nombreux animaux présentant des lésions, ou peut être insidieuse et caractérisée par des porteurs sans lésion. Dans les deux modes de présentation, un risque important pour les contacts humains est présent; en effet, l’infection humaine par des personnes manipulant les animaux est souvent la première indication que l’infection se trouve dans la colonie. La plupart des infections humaines se produisent sur les parties exposées et relativement glabres du corps; en particulier les mains et les bras.
Comme mentionné ci-dessus, l’infection prend une forme variable chez le rat et on pense qu’elle est influencée par un certain nombre de facteurs qui comprennent ceux qui influent directement sur la susceptibilité ou la résistance, par exemple, l’âge, la constitution génétique, la compétence immunologique et la phase du cycle de croissance des cheveux, ainsi que d’autres facteurs moins compris. Les injections de cortisone pour tester expérimentalement cette hypothèse n’ont pas influencé le degré d’infection par rapport à celui des cobayes non traités (Fisher et Sher, 1972). Les quelques épizooties signalées avec des rats lésés se sont toutes produites chez des animaux non utilisés avant l’expérimentation (Dolan et al., 1958; Povar, 1965; Mizoguchi et al., 1986). Les lésions, lorsqu’elles sont présentes, peuvent se produire dans la peau de n’importe quelle zone, mais sont plus fréquentes sur le cou, le dos et la base de la queue. Les lésions ne sont pas telles que décrites classiquement, c’est-à-dire uniformément discoïdes avec une alopécie et des marges surélevées, mais peuvent plutôt avoir un aspect papularpustuleux ou érythémateux avec une perte de cheveux irrégulière et inégale. Les lésions sur la queue (généralement observées chez la souris) n’ont pas été observées chez le rat par Povar (1965) lors de l’épidémie qu’il a décrite.
Le diagnostic de dermatophytose est établi par la démonstration d’éléments fongiques dans les raclures cutanées et l’isolement de l’organisme responsable par culture. L’histopathologie de la peau affectée est favorable à l’attribution du développement de lésions à des dermatophytes isolés si l’invasion des structures épidermiques peut être démontrée. Les coupes histologiques colorées avec une tache de champignon Gridley révèlent des éléments fongiques dans l’épithélium superficiel et l’invasion des follicules pileux. Une invasion secondaire des lésions fongiques par des bactéries avec une inflammation suppurée est couramment observée et est la cause de lésions ressemblant à des kerions chez les animaux et l’homme. Le diagnostic différentiel de la dermatophytose doit également tenir compte d’autres causes de lésions cutanées d’apparence similaire, notamment la dermatite ulcéreuse staphylococcique, la lutte contre les traumatismes liés aux morsures, la mastication des cheveux ou le troc par les compagnons de cage et l’hypersensibilité ectoparasitaire (Kunstyr, 1980).
Les raclures cutanées doivent être soigneusement prélevées à la périphérie de la lésion, montées dans de l’hydroxyde de potassium à 10% sous une lame de couverture annelée de vaseline et examinées au microscope immédiatement et à nouveau en 30 minutes. Lorsqu’ils sont présents, des mycéliums cloisonnés sont observés dans les cellules squameuses. De petites spores (2 à 3 µm) envahissent les poils ectothrix, en particulier près de la base, dans les infections à T. mentagrophytes. Les raclures, collectées de la même manière, doivent être inoculées sur la surface d’un milieu gélosé approprié et cultivées en aérobic à température ambiante pendant au moins 10 jours avant d’être rejetées comme négatives. Parmi les milieux appropriés, on peut citer le DTM (milieu d’essai dermatophyte avec indicateurs de couleur) (Carroll, 1974) ou le milieu de Sabouraud avec cycloheximide et chloramphénique pour inhiber les contaminants non dermatophytes (Rosenthal et Furnari, 1957; Rebell et Taplin, 1970). Les caractéristiques microscopiques typiques de T. mentagrophytes (macroconidies, spirales) doivent être démontrées (Rebell et Taplin, 1970).
La technique de la brosse à cheveux de MacKenzie est utilisée pour évaluer l’incidence des rats porteurs asymptomatiques sans lésion (Mackenzie, 1963; Rosenthal et Wapnick, 1963; Papaini et al., 1997). Cette technique peut être utilisée pour dépister des groupes d’échantillons de rats afin d’établir leur statut de porteurs asymptomatiques de dermatophytes, bien qu’en l’absence de lésions suspectes, des tests de surveillance de la santé planifiés pour les dermatophytes ne soient pas recommandés par FELASA (Nicklas et al., 2002). Certaines preuves indiquent que cet état peut survenir fréquemment chez le rat (Dolan et al., 1958; Dolan et Fendrick, 1959; Gugnani et coll., 1971; Balsari et coll., 1981; Papini et coll., 1997) comme on le reconnaît plus communément chez le cobaye, la souris et le chat (Fuentes et Aboulafia, 1955; Fuentes et al., 1956; Menges et al., 1957; Dolan et coll., 1958; Rosenthal et Wapnick, 1963; Gip et Martin, 1964; Feuerman et al., 1975). Dans cette technique, l’animal à cribler est maintenu sur une boîte de Pétri ouverte de milieu gélosé approprié et les cheveux sont brossés avec une brosse chirurgicale stérile pour que les poils, les flocons et les débris cellulaires desquamés tombent directement sur la surface moyenne. La plaque est incubée comme décrit ci-dessus.
L’éradication et le contrôle dans les colonies de recherche impliquent généralement la destruction des groupes affectés et la stérilisation ou la désinfection de l’équipement et des surfaces environnementales. Une approche modifiée de redérivation pour l’éradication dans une colonie reproductrice a été décrite par Mizoguchi et al. (1986). Ce programme comprenait l’élimination de tous les rats de la colonie, la désinfection des locaux avec du formol et du propionate de sodium, et le réapprovisionnement ultérieur de la colonie avec des sevrages provenant de barrages non ligneux trempés dans du propionate de sodium avant la réintroduction. Bien que l’efficacité clinique de l’alimentation en griséofulvine pour traiter la dermatomycose ait eu des résultats mitigés chez d’autres espèces de laboratoire (Cetin et al., 1965; Pombier et Kim, 1975), son efficacité à cet effet n’a pas été évaluée chez le rat. L’organisme n’est pas connu pour traverser le placenta et n’a pas été récupéré chez des rats de laboratoire élevés en barrière.